技术方法

胡杨组织培养叶片及插穗毛状根发生

展开
  • 1北京林业大学生物科学与技术学院, 北京 100083
    2北京市延庆区第一职业学校, 北京 102100

# 共同第一作者

收稿日期: 2016-02-04

  录用日期: 2016-04-26

  网络出版日期: 2017-04-05

基金资助

国家自然科学基金(No.31370598, No.J1103516)

Rooting Induced on in vitro Leaves and Fresh Cuttings of Populus euphratica

Expand
  • 1College of Biological Sciences and Biotechnology, Beijing Forestry University, Beijing 100083, China
    2Beijing Yanqing District First Vocational School, Beijing 102100, China

# Co-first authors

Received date: 2016-02-04

  Accepted date: 2016-04-26

  Online published: 2017-04-05

摘要

胡杨(Populus euphratica)是唯一分布在干旱沙漠地区的高大乔木, 根蘖能力强, 但自然条件下插穗难以生根, 扦插繁殖困难。该文研究发根农杆菌菌株ATCC11325诱导胡杨发根, 菌液浓度为OD600=0.4, 添加100 mg·L-1乙酰丁香酮, 叶片切段划伤预培养后侵染10分钟, 培养20天, 在叶片创伤部位诱导发生无向性的健壮毛状根; 浸染肉质根插穗, 须根发生和植株成活率从20%提高到60%, 且地上部分分枝多, 生长茂盛。该发根农杆菌菌株显著促进胡杨插穗生根成活。

本文引用格式

王大鹏, 唐嘉泽, 邵明成, 张文彪, 王华芳 . 胡杨组织培养叶片及插穗毛状根发生[J]. 植物学报, 2017 , 52(2) : 210 -217 . DOI: 10.11983/CBB16024

Abstract

Populus euphratica is the unique natural distribution arbor tree growing in the dry desert environment, with root suckering, but cuttings of roots are difficult to grow. This study explored the new ways of rooting induced by Agrobacterium rhizogenes. The strain ATCC11325 can induce hairy roots with no-tropism on in vitro leaf sections. The leaves were cut, scarred, co-cultivated, soaked for 10 min in the microbial agent at OD600=0.4 with AS 100 mg·L-1 added and cultured on tissue culture media for 20 days. Hairy rooting occurred on fresh cuttings soaked with the A. rhizogenes strain solution. The rooting and survival rate reached 60%, and aboveground parts developed more branches and showed vigorous growth. The A. rhizogenes strain promoted rooting of poplar tree fresh cuttings.

参考文献

[1] 郝宇 (2009). 多拷贝rol基因在杨树中表达差异分析. 硕士论文. 保定: 河北农业大学. pp. 1-48.
[2] 孔卫青, 杨金宏, 卢从德 (2010). 发根农杆菌诱导桑树毛状根体系的建立. 西北植物学报 30, 2317-2320.
[3] 李玲, 谢文军, 于树宏, 刘慧丽 (2001). 发根农杆菌对烯茉莉插条不定根发生的影响. 华南师范大学学报(自然科学版) (3), 23-25.
[4] 梁海荣, 吴红雪, 杨雪芹, 白莹, 张晓丽 (2009). 胡杨硬枝嫩枝扦插对比试验. 内蒙古林业科技 35(3), 32-35.
[5] 刘连旺, 张永清, 祁建军, 孙鹏, 廖登群, 庞小存, 李先恩 (2015). 地黄毛状根的诱导及条件优化. 山东农业科学 47, 47-50.
[6] 刘茂秀, 史军辉, 王新英 (2015). 植物生长调节剂对胡杨嫩枝扦插生根特性的影响. 防护林科技 (3), 9-11.
[7] 刘伟, 郝建平 (2007). 发根农杆菌的研究进展及其应用. 山西农业科学 35(7), 13-16.
[8] 刘兴菊, 刘英亘, 梁海永, 杨敏生, 周怀军 (2006). 发根农杆菌转化三倍体毛白杨. 西北林学院学报 21, 76-79.
[9] 施和平, 李玲, 潘瑞炽 (1998). 发根农杆菌对黄瓜的遗传转化. 植物学报 40, 470-473.
[10] 陶均, 李玲 (2005). 发根农杆菌菌株的综合鉴定及活力比较. 亚热带植物科学 34(2), 11-14.
[11] 陶均, 谭汝芳, 李玲 (2006). 发根农杆菌介导的向日葵遗传转化. 作物学报 32, 743-748.
[12] 王大为, 刘克彪 (2015). 四种生长调节剂对胡杨嫩枝扦插成苗的影响. 甘肃科技 31(6). pp. 142-145.
[13] 王连荣, 缪丽萍, 张晓军, 杨敏 (2010). 转不同rol基因741杨株系相关性状比较分析. 植物遗传资源学报 11, 451-456.
[14] 王文彪, 梁超, 张吉树 (2013). 我国胡杨繁育技术研究进展. 江西农业学报 (3), 46-49.
[15] 吴红雪, 潘玉怀, 梁海荣 (2010). 不同浓度生根粉对胡杨硬枝扦插的影响. 内蒙古林业科技 36(4), 21-26.
[16] 武姣, 孔瑾, 王忆, 韩振海, 许雪峰 (2008). 发根农杆菌介导山定子遗传转化及发根再生植株. 园艺学报 35, 959-966.
[17] 杨至德, 王雁, 刘雪梅, 缪毙, 汤巧香 (2007). 发根农杆菌诱导牡丹生根的初步研究. 林业科学研究 20, 292-295.
[18] 张广辉, 梁月荣, 陆建良 (2006). 发根农杆菌介导的茶树发根高频诱导与遗传转化. 茶叶科学 26, 1-10.
[19] 张平冬, 康向阳, 高鹏, 韩锦 (2003). 胡杨离体培养分化增殖途径的比较研究. 北京林业大学学报 25(6), 50-54.
[20] 张平冬, 康向阳, 韩锦 (2005). 胡杨嫁接繁殖研究初报. 干旱区资源与环境 19(4), 197-200.
[21] 周达锋, 卜学贤, 陈维伦 (1993). 发根农杆菌Ri质粒的分子生物学及其应用前景. 植物学通报 10(2), 24-34.
[22] 周伟, 姚倩雯, 钱忠英, 沈亚芳, 刘园园, 张磊, 周根余, 开国银 (2007). 丹参毛状根诱导条件的优化. 上海师范大学学报(自然科学版) 36(2), 93-98.
[23] 周延清, 张根发, 苑保军 (1996). 发根农杆菌研究进展. 遗传 18(4), 45-48.
[24] 宗晓秋, 张东升, 黄文坤, 彭焕, 彭德良 (2012). 发根农杆菌诱导大豆毛状根体系的建立. 华中农业大学学报 31, 699-703.
[25] Chaudhuri KN, Ghosh B, Tepfer D, Jha S (2006). Spontaneous plant regeneration in transformed roots and calli fromTylophora indica: changes in morphological phenotype and tylophorine accumulation associated with transformation by Agrobacterium rhizogenes. Plant Cell Rep 25, 1059-1066.
[26] Cho HJ, Widholm JM (2002). Improved shoot regeneration protocol for hairy roots of the legumeAstragalus sinicus. Plant Cell Tiss Org 69, 259-269.
[27] Fujimoto Y, Ohyama K, Nomura K, Hyodo R, Takahashi K, Yamada J, Morisaki M (2000). Biosynthesis of sterols and ecdysteroids in Ajuga hairy roots. Lipids 35, 279-288.
[28] Michael T, Spena A (1995). The plant oncogenesrol A, B, and C from Agrobacterium rhizogenes. Agrobacterium Protocols 44, 207-222.
[29] Moyano E, Jouhikainen K, Tammela P, Palazón J, Cusidó RM, Piñol MT, Teeri TH, Oksman-Caldentey KM (2003). Effect ofpmt gene overexpression on tropane alkaloid production in transformed root cultures of Datura metel and Hyoscyamus muticus. J Exp Bot 54, 203-211.
[30] Oksman-Caldentey KM, Sévon N (2002). Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation: root cultures as a source of alkaloids.Planta Med 68, 859-868.
[31] Schmülling T, Schell J, Spena A (1988). Single genes fromAgrobacterium rhizogenes influence plant development. EMBO J 7, 2621.
[32] Xiao K, Zhang C, Harrison M, Wang ZY (2005). Isolation and characterization of a novel plant promoter that directs strong constitutive expression of transgenes in plants.Mol Breeding 15, 221-231.
[33] Yang Y, Jiang XT, Zhang T (2014). Evaluation of a hybrid approach using UBLAST and BLASTX for metagenomic sequences annotation of specific functional genes.PLoS One 9, e110947.
文章导航

/